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專題蛋白質技術的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳實驗
更新時間:2019-03-01 點擊次數(shù):1784

[原理]
蛋白質在十二烷基硫酸鈉(SDS)和巰基乙醇的作用下,分子中的二硫鍵還原,氫鍵等打開,形成按1.4gSDS/1g蛋白質比例的SDS-蛋白質多肽復合物,該復合物帶負電,故可在聚丙烯酰胺凝膠電泳中向正極遷移,且主要由于凝膠的分子篩作用,遷移速率與蛋白質的分子量大小有關,因此可以濃縮和分離蛋白質多肽。

聚丙烯酰凝膠電泳分離蛋白質多數(shù)采用一種不連續(xù)的緩沖系統(tǒng),主要分為較低濃度的成層膠和較高濃度的分離膠,配制凝膠的緩沖液,其pH值和離子強度也相應不同,故電泳時,樣品中的SDS-多肽復合物沿移動的界面移動,在分離膠表面形成了一個極薄的層面,大大濃縮了樣品的體積,即SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳的濃縮效應。

[試劑]
1、30%凝膠貯備液:稱取29g 丙烯酰胺(Acr)和1g 甲叉-雙丙烯酰胺(Bis),加蒸餾水至100ml,濾紙過濾貯存。
2、10% SDS:稱取SDS 10g 加蒸餾水至100ml。
3、10%過硫酸胺(AP)
4、N,N,N’,N’四甲基乙二胺(TEMED)
5、5×電泳緩沖液:于900ml蒸餾水中分別加入15.1g Tris、94g甘氨酸、5g SDS,混勻后加蒸餾水至1 000ml。
6、1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8)和1.0mol/L Tris-HCl(pH6.8)
7、電泳加樣緩沖液
10mmol/LpH6.8 Tris
200mmol/LDTT
4%SDS
0.2% 溴酚蘭
20% 甘油
8.正丁醇

[器材]
1、移液器
2、移液管
3、燒杯
4、垂直電泳槽
5、電泳儀

[操作步驟]
1.配制分離膠濃度8%、體積15ml
H2O 6.9ml
30%凝膠貯備液 4.0ml
1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8) 3.8ml
10%SDS 0.15ml
10%過硫酸胺 0.15ml
TEMED 0.01ml
2.一旦加入TEMED,混勻后立即小心地將分離膠注入準備好的玻璃板間隙中,為成層膠留有足夠空間。用毛細管輕輕在其頂層加入幾毫升正丁醇,以阻止空氣中的氧氣對凝膠聚合的抑制作用。
3.聚合完成之后,倒掉覆蓋液體,用去離子水洗凝膠上部數(shù)次,盡可能用吸水紙吸干頂端的殘存液體。
4.配制5%成層膠5ml,插入梳子,小心避免混入氣泡,垂直放置室溫下。

H2O 3.4ml
30%凝膠貯備液 0.83ml
1.0mol/Ltris-HCl(pH6.8) 0.63ml
10%SDS 0.05ml
10%過硫酸胺 0.05ml
TEMED 0.01ml
5.在成層膠聚合時,將樣品與加樣緩沖液混勻,100℃加熱3min。
6.成層膠聚合完成后,用去離子水沖洗梳孔以除去未聚合的丙烯酰胺,將凝膠放入電泳槽上。
7.加樣
8.電泳:開始時電壓為8V/cm凝膠,染料進入分離膠后,將電壓增加到15V/cm凝膠,繼續(xù)電泳直到染料抵達分離膠底部,斷開電源。
9.取下凝膠,固定、染色或進行Western blot分析。

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